气相色谱-质谱法测定食品中3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩的含量
□ 简德威 熊含鸿 郑悦珊 洪泽淳 陈科(通讯作者) 广东省食品检验所
摘 要:本文的目的是建立准确、高效的气相色谱-质谱法测定食品中3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩含量的检测方法。样品经正庚烷超声萃取定容后,采用电子轰击电离源(EI)、选择离子监控(SIM)模式进行测定,外标法定量;对前处理中的萃取溶剂、萃取方法、萃取时间进行研究,并对检测方法进行方法学验证。根据不同空白基质的加标回收试验的结果显示,本方法前处理最优条件为使用正庚烷超声萃取15min。3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩在0.1~2.0mg/L浓度范围内线性良好,相关系数R2=0.997;在不同基质及不同加标浓度下,回收率为82.4%~100.8%,相对标准偏差为1.74%~3.90%。3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩在不同基质中的检出限均可达到0.05mg/kg,定量限达到0.15mg/kg。故得出结论,本研究通过对前处理条件的研究和检测方法的方法学验证,建立了一种气相色谱-质谱法测定食品中3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩含量的检测方法,该方法定性效果好、定量准确,且前处理操作简便、技术难度较低。
关键词:3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩 气相色谱-质谱法 食品 超声萃取
1 引言
3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩(3-acetyl-2,5-dimethylthiophene,ADP)是一种可以作为咸味香精的食品添加剂,其于2002年开始被用作食品用香料,常用于肉类食品加工中以赋予食品烤坚果味[1]。2013年,欧洲食品安全管理局(EFSA)对ADP进行安全评估,发现该物质在体内和体外实验均表现出基因毒性,会破坏DNA及细胞中的遗传物质,可能损害人体健康,作为食品用香料使用存在安全隐患[2],长期使用该物质存在食品安全问题和隐患,易导致食品安全事件(事故)发生。因此,EFSA将ADP从许可香料中剔除,并严禁ADP作为食用香料投放市场或用于食品[3,4]。同年6月14日,欧盟委员会也通过法规Regulation(EC)No 545/2013,禁止将ADP作为食品用香料使用。目前,我国仍允许ADP作为食品用合成香料使用,并收录于国家标准GB 2760-2014[5]中。但是,中国香精香料化妆品工业协会于2013年8月14日发布自律文件(香化协字[2013]62号),要求香料生产企业不得生产用作食品用香料的3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩,食用香精中不得使用该物质[6]。
目前,国内对3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩的检测没有相应的国家标准。查找相关文献可发现,对ADP的检测方法有液相色谱法[7]、气相色谱-质谱法[8,9]及气相色谱三重四级杆质谱法[10]等。液相色谱法的优点是分离效率高、检测灵敏度高、应用范围广,缺点是定性效果差,容易受到杂质、基质等因素的干扰;气相色谱-质谱法的优点是前处理简单、操作方便、定性效果较好,但在复杂的基质样品中,背景响应较高,致使检测灵敏度降低;气相色谱三重四级杆质谱法的优点是定性更准确、抗干扰能力强、样品基质背景的响应较低、灵敏度也高于单级质谱,更适用于复杂基质中微量、痕量物质的检测[11-13],但气相色谱三重四级杆质谱法操作较复杂,仪器较昂贵,技术难度较高。
考虑到食品基质复杂和检测技术的难度,采用气相色谱-质谱法测定3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩可以一定程度地避免受到杂质和基质的干扰,且定性效果好、定量准确、操作简便、技术难度较低,因此本研究选择气相色谱-质谱法作为检测方法。
2 材料与方法
2.1 仪器与试剂
2.1.1 仪器设备
GCMS-QP2010Ultra气相色谱-质谱联用仪[配电子轰击(EI)电离源],日本岛津公司;AB204-S电子天平,瑞士梅特勒-托利多公司;Multifuge X3R离心机,美国赛默飞世尔公司;KQ-500DE超声清洗器,中国科桥公司;Vortex Genius 3涡旋混合器,德国IKA公司。
2.1.2 材料与试剂
正庚烷(色谱纯),康科德科技有限公司;正己烷(色谱纯),康科德科技有限公司;乙醇(色谱纯),康科德科技有限公司;0.45μm有机滤膜,美国PALL公司;3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩标准品(纯度99%),上海Aladdin公司。
2.2 实验方法
2.2.1 标准溶液配制
2.2.1.1 3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩标准储备溶液的配制
准确称取3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩标准品20mg(精确至0.0001g),用正庚烷溶解并定容至10mL,此溶液浓度为2mg/mL。
2.2.1.2 3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩标准中间溶液的配制
将3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩标准储备溶液(2.2.1.1)用正庚烷稀释成浓度为20mg/L的标准工作溶液。
2.2.1.3 3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩标准系列工作液的配制
用正庚烷将标准中间溶液(2.2.1.2)稀释成最终浓度为0.1、0.2、0.5、1.0、2.0mg/L的标准系列工作溶液。
2.2.2 前处理方法
称取1.0g均匀样品(精确至0.0001g)置于50mL离心管中,加入5mL正庚烷,超声提取15min,5000r/min离心5min。然后将提取液转至10mL容量瓶,残渣用3mL正庚烷重复提取一次,合并所有提取液至10mL容量瓶,用正庚烷定容至10mL,过0.45μm有机滤膜,供气相色谱-质谱联用仪分析。
2.3 仪器条件
2.3.1 色谱条件
CP-wax:50m×0.25mm(内径)×0.25μm(膜厚)极性毛细管色谱柱;载气:He,纯度99.999%,流速1.5mL/min;进样口温度:220℃;进样方式:不分流进样;进样量:1μL;升温程序:初始温度50℃保持1min,以20℃/min升温至200℃保持3 min,再以10℃/min升温至220℃保持5min。
2.3.2 质谱条件
电子轰击电离源(EI);电离能量:70eV;接口温度:225℃;离子源温度:230℃;溶剂延迟时间:5min;测定方式:选择离子监控(SIM)。3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩参考保留时间及定性、定量离子见表1,3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩的质谱图及色谱图见图1、图2。
图1 3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩质谱图
图2 3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩色谱图
3 结果与分析
3.1 前处理条件的研究
3.1.1 萃取溶剂的研究
日常检验检测中,实验室大多数使用的低毒萃取溶剂为正己烷、正庚烷、乙醇、异辛烷、二氯甲烷等。本方法选择常用的正己烷、正庚烷、乙醇作为萃取溶剂,以超声萃取方式测试不同基质加标样品的回收率,考察3种溶剂的萃取效率,选择效率最高的溶剂作为萃取试剂,结果见表2。
从表2的检验结果可以看出,使用正庚烷的萃取效率最高,回收率在88.5%~93.5%;其次是乙醇,回收率在79.3%~5.6%;正己烷的回收率最低,只有58.2%~60.5%。考虑到乙醇和水互溶,而带入的水分可能会影响质谱性能,因此选择正庚烷作为萃取溶剂。
3.1.2 萃取方法的研究
常用的萃取方法有超声萃取、涡旋提取、索氏提取等,本方法采用超声萃取、涡旋提取,使用正庚烷为萃取试剂,测试不同基质加标样品的回收率,选取回收率最高的萃取方法作为本方法的最终萃取方法,结果见表3。
从表3的检测结果可以看出,不同基质通过超声萃取的回收率在90.8%~95.3%,均高于涡旋提取的回收率(85.2%~89.9%),因此选择超声萃取作为本方法的萃取方法。
3.1.3 萃取时间的研究
以正庚烷为萃取试剂,通过超声萃取法,研究萃取1、5、10、15、20、30分钟后不同基质加标样品的回收率,结果见图3。
图3 不同萃取时间段样品的回收率
从图3可以看出,随着萃取时间的增加,回收率结果呈现递增趋势,但萃取时间超过15分钟后回收率无明显变化,考虑到检测方法的效率,故选取15分钟作为本方法的萃取时间。
3.2 方法学验证
3.2.1 标准曲线
通过标准溶液的配制与测定,得出本方法的标准曲线,见图4。
图4 标准曲线图
以3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩的浓度为横坐标,峰面积为纵坐标绘制标准曲线,3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩在0.1~2.0mg/L内呈线性关系,线性回归方程为Y=495019.8X-18840.62,相关系数R2=0.997。
3.2.2 方法检出限与定量限
方法的检出限以3倍信噪比(S/N)计算,定量限以3倍检出限计算。通过测定不同基质的低加标含量,可计算出本方法的检出限和定量限,结果见表4。
从表4结果可以看出,计算得到不同基质的检出限分别为0.046、0.048、0.050mg/kg,因此将本方法的检出限定为0.05mg/kg,定量限为0.15mg/kg。
3.2.3 准确性
通过对不同基质加标量为0.5mg/kg的含量测定,研究本方法的准确性,结果见表5。
从表5可以看出,加标量为0.5mg/kg的固体基质样品,重复测定6次的平均值为0.47mg/kg,回收率为94.0%;加标量为0.5mg/kg的半固体基质样品,重复测定6次的平均值为0.47mg/kg,回收率为94.0%;加标量为0.5mg/kg的液体基质样品,重复测定6次的平均值为0.49mg/kg,回收率为98.0%,均符合GB/T 27404-2008《实验室质量控制规范 食品理化检测》的要求[14],说明本方法可准确定量样品中3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩的含量。
3.2.4 重复性
通过对3种不同基质的不同浓度加标含量的测定,计算其回收率和相对标准偏差(RSD),研究本方法的重复性,结果见表6。
从表6的结果中可以看出,固体基质低加标(0.3mg/kg)6次重复测定的回收率在83.6%~89.3%之间,RSD为2.45%;中加标(0.6mg/kg)6次重复测定的回收率在85.2%~91.7%之间,RSD为2.78%;高加标(1.0mg/kg)6次重复测定的回收率在87.1%~93.3%之间,RSD为2.87%。
半固体基质低加标(0.3mg/kg)6次重复测定的回收率在82.4%~90.2%,RSD为3.90%;中加标(0.6mg/kg)6次重复测定的回收率在86.1%~91.3%,RSD为2.20%;高加标(1.0mg/kg)6次重复测定的回收率在90.9%~100.8%,RSD为3.57%。
液体基质低加标(0.3mg/kg)6次重复测定的回收率在86.2%~94.8%之间,RSD为3.46%;中加标(0.6mg/kg)6次重复测定的回收率在86.7%~91.2%之间,RSD为1.74%;高加标(1.0mg/kg)6次重复测定的回收率在92.1%~101.3%之间,RSD为3.23%。
通过不同基质的不同浓度加标回收率及RSD可以看出,本方法满足GB/T 27404-2008《实验室质量控制规范 食品理化检测》的要求[14]。
4 结论
本研究建立了一种气相色谱-质谱法测定食品中3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩含量的检测方法。通过对萃取溶剂、萃取方法、萃取时间的研究,确定了较优且操作简便的前处理条件,并对检测方法的线性、检出限、定量限、准确性、重复性进行方法学验证,确保本方法的结果准确可靠。本研究建立的气相色谱-质谱法测定食品中3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩含量的检测方法,定性效果好、定量准确,且前处理操作简便,技术难度较低,是对目前相对较少的3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩的检测方法的补充,为建立3-乙酰基-2,5-二甲基噻吩检测的国家标准或方法提供参考依据,同时对执法部门进行食品加工和销售过程中违规、违法添加化学原料行为的监管提供技术支持,避免食品安全事件发生,从而保障食品行业健康发展和人民舌尖上的安全。
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基金项目:广东省药品监督管理局2019年科技创新项目(2019YDZ36)。
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